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Sequence and Functional Analysis of the
Chromosome Replication Origin (oriC) of Streptoverticillum caespitosus
ATCC27422
MA Wei, MAO Xiang, LU Jie, JIANG Wei-Hong, QIN Zhong-Jun, ZHAO Guo-Ping*
(
Institutes for Biological Sciences, the
200032,
)
Abstract Twenty-two
DnaA boxes were identified in the chromosome replication origin (oriC) of
Streptoverticillum caespitosus ATCC27422 based upon the characteristics of
consensus sequences. The 21st and 22nd DnaA boxes overlapped 8 base pairs each
other reversely. Compared with the oriC database of actinomycetes, similar
overlapping DnaA boxes were recognized in several species of Streptomyces and
Mycobacterium. These overlapping DnaA boxes were composed of the last two DnaA
box (21st and 22nd) in the Streptomyces species, but the of 1st and 2nd ones in
the Mycobacterium species. The consensus sequence of the overlapping DnaA box
is CTGTGCACAA, one base longer than the normal DnaA box sequence presumably due
to the overlapping structure. Although the DnaA boxes exist in the 189-792 bp region only, the 1-188 bp and 793-939 bp regions are also important
to the DNA replication. Deletion of the 1-188 bp region may cause absolute loss of DNA replication initiation
activity measured by the transformation efficiency of plasmids with truncated
oriC. When the 793-939 bp region was truncated, the transformation efficiency reduced
about 40%. If the oriC was cloned into a vector with partial flanking region
sequences (partial dnaAand dnaN gene sequences), the transformation rate was
about 4.3-fold lower than that of the construct containing the oriC region
only. However, the transformants were much more similar to the host with
respect to the morphology of colony and mycelium. The cis-regulatory functions
of the flanking sequences, which may influence the initiation efficiency of the
chromosome replication and/or the stability of replicon, are thus suggested.
Key
words Streptoverticillum
caespitosus; replication origin (oriC); overlapping DnaA box
____________________________________________
Received;
2, 2003
This work was supported by a grant from Key
Program of National Natural Science Foundation of China (No. 10039630010)
*Corresponding author: Tel, 86-21-64728788;
Fax, 86-21-64042385; e-mail, [email protected] or [email protected]
头状链轮丝菌(Streptoverticillum
caespitosus)ATCC27422染色体复制起始区(oriC)的序列分析与功能研究
( 中国科学院上海生命科学研究院植物生理生态研究所, 上海200032 )
摘要 头状链轮丝菌(Streptoverticillum caespitosus)ATCC27422染色体复制起始区(oriC)内共有22个DnaA盒结构; 其中第21、 22个DnaA盒彼此方向相反、
相互重叠8个碱基。
放线菌oriC数据库搜索发现, 这种重叠DnaA盒在抗生素链霉菌、 结核分枝杆菌等几种放线菌中也同样存在。 在分枝杆菌中一般由第1、 2个DnaA盒组成,
而在链霉菌中由最后的两个DnaA盒(第21、 22)组成。 重叠DnaA盒保守序列为CTGTGCACAA, 长度为10个碱基, 即由于重叠的缘故比正常DnaA盒长1个碱基。 通过测量载体对变铅青链霉菌的转化效率研究了oriC不同部位在染色体复制起始中的功能和地位。 头状链轮丝菌oriC序列的5′端1~188位的片段虽然不包含有DnaA盒结构, 但该片段的缺失, 造成oriC复制起始功能的完全丧失。
3′端793~939位片段同样没有DnaA盒结构, 该片段的缺失, 仅发生转化效率的降低约40%, 说明oriC的793~939位序列对DNA复制起始效率以及复制子稳定性起重要作用。 当oriC被克隆入载体时两端各带有一段dnaA、 dnaN基因的部分序列, 所构建的载体虽然转化效率较低,
但转化子的菌落、 菌丝形态与宿主菌原有的表型相接近,
由此推断oriC两端的序列除了编码各自产物外, 可能通过影响染色体DNA复制的起始效率、 复制子稳定性等对染色体的复制起始发挥顺式调控作用。
关键词 头状链轮丝菌; 染色体复制起始区(oriC);
重叠DnaA盒
染色体DNA复制起始的分子机理以在E.
coli中的研究最为深入, 已基本弄清楚了复制的过程, 并构建了较为完善的复制起始分子模型[1]。 然而,
自然界中还存在着以链霉菌为代表的一大类革兰氏阳性真细菌, 这类细菌染色体DNA的(G+C)%含量较高,
具有复杂的生活史, 能产生结构复杂、 具有多种生理活性的次生代谢产物,
而且该类微生物中有不少种类的染色体为线性构型。 这类微生物中复制起始区的研究起步较晚,
且主要局限于链霉菌[2]和分枝杆菌[3]。 研究发现, 两类微生物的复制起始区(oriC)的结构有较大的差别。 链霉菌和分枝杆菌的oriC比E. coli的不仅长度长, 结构也复杂得多, DnaA盒的保守序列也不同。 对这一大类微生物oriC的研究, 不仅能够丰富和完善人类对染色体DNA复制起始的认识, 而且可能帮助人们解开DNA复制过程中分子调控机理之迷, 因而具有重要的理论价值。
同时, 由于链霉菌、 分枝杆菌等与人类的经济活动、 健康事业等关系密切,
对其染色体DNA复制分子机理的研究将有助于人类更有效地控制或利用这些微生物。
头状链轮丝菌(Streptoverticillum caespitosus)ATCC27422是肿瘤治疗药物丝裂霉素A的产生菌, 本工作主要围绕该菌已克隆的oriC[4]进行功能结构的分析与研究。
1 材料和方法(Materials and Methods)
1.1 材料
1.1.1 酶和试剂 限制性内切酶、 T4DNA连接酶、 碱性磷酸酶、 Taq酶等为TaKaRa公司产品。 其他生化试剂购自上海生工生物技术公司。
1.1.2 菌株与培养基 菌株与质粒见表1。
E. coli以固体或液体LB培养基于37℃培养,
E. coli转化子培养时, 培养基中加相应的抗生素, 浓度为: 100 mg/L氨苄青霉素。 变铅青链霉菌和头状链轮丝菌固体培养基为R2YE, 液体培养基为YEME, 转化子在培养基中加硫链丝菌素,
固体R2YE中终浓度为50 mg/L, YEME液体培养基中的终浓度为5 mg/L[7], 培养温度为28 ℃。
Table 1 Strains
and plasmids
|
Strains |
Genotype |
Resources |
|
|
Strains |
S. caespitosus ATCC27422 |
Wild type |
ATCC |
|
|
S. lividans ZX7 |
pro str-6 rec-46 |
[5] |
|
|
E. coli |
supE4, ΔlacZU 169 (80 lacZΔM15), hasdR17, recAI, endAI, gyrA96, thi I, rel AI |
[6] |
|
Plasmid |
pMD18-T |
ampR |
TaKaRa |
|
|
pQC156 |
ampR, tsr |
This |
|
|
pMJ9 |
pQC156 carrying S. caespitosus |
[4] |
|
|
pMJ22 |
pQC156 carrying S. caespitosus |
This |
|
|
pMJ23 |
pQC156 carrying S. caespitosus |
This |
|
|
pMJ24 |
pQC156 carrying S. caespitosus |
This |
|
|
pMJ25 |
pQC156 carrying S. caespitosus |
This |
1.2 方法
1.2.1 变铅青链霉菌和E. coli DH5α的转化 变铅青链霉菌采用原生质体转化, 方法参照文献[7]。 E. coli DH5α采用电转化, 电转化感受态细胞制备以及电转化参照文献[8]。
1.2.2 DNA操作 头状链轮丝菌和变铅青链霉菌总DNA的提取参照文献[7], DNA的体外操作, 如质粒提取、 酶切、 连接、 电泳、 杂交等参照文献[9]及产品使用说明。
1.2.3 DNA序列测定与分析 PCR引物合成和DNA序列测定由基康生物技术公司进行。 引物设计使用引物软件进行(Primer, Primer Designer
Ver. 2.0, Copy Right 1990-1991, Scientific & Educational Software, 1990), 亚克隆所使用的PCR引物见表2。PCR条件为: 94 ℃ 3 min, 94 ℃ 1 min, 58~62 ℃复性1 min, 72 ℃延伸1 min, 共30个循环。 序列分析采用Biosino的基于网络的序列分析软件SwqWeb (http://gcg.biosino.org)以及BioEdit(Tom Hall, Sequence Alignment Editor 1997. Department of
Microbiology, North Carolina State University, USA. Copy right 1997-2001)等序列分析软件进行。
Table 2 Primer
for sub-cloning of oriC of S. caespitosus
|
Primer |
Primer sequence |
Primer position |
|
P1 |
5′-AGCTGACCAACCGCATCAAG-3′ |
-27 |
|
P2 |
5′-CAGCGCCGGGTACTCCTC-3′ |
1290 |
|
P3 |
5′-AAGCTTCTGACGGACGGTCG-3′ |
1 |
|
P4 |
5′-AAGCTTACCGGAACCGCCTC-3′ |
939 |
|
P5 |
5′-AAGCTTCCGGTTCTCCACAG-3′ |
189 |
|
P6 |
5′-AAGCTTCGCGGCCGAGTTGT-3′ |
792 |
HindIII recognition site is underlined.
2 结果(Results)
2.1 头状链轮丝菌oriC片段中DnaA盒的结构分析
2.1.1 头状链轮丝菌oriC序列中DnaA盒的数量 高GC含量革兰氏阳性菌DnaA盒保守序列为TTGTCCACA[10], 采用SeqWeb中Findpattern模块对头状链轮丝菌oriC序列进行分析, 寻找与DnaA盒保守序列差异少于或等于2个碱基的序列, 共发现22个DnaA盒, 结果见图1。 对已发表的放线菌oriC序列重新分析发现, 链霉菌oriC中DnaA盒的数量在22个左右, 分枝杆菌的oriC中存在5个DnaA盒。
结果见表3。
