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Redox-dependent
Changes in Structure and Function of hHSF1
LIN Zheng*, HUANG Fan, MA Zhong-Fu, XU
Kang, LIU Alice Y1
( The
First Hospital Affiliated to Sun Yat-Sen University, Guangzhou, 510080 China; 1Department
of Cell Biology and Neuroscience, Rutgers State University of New Jersey 08854,
USA )
Abstract To
evaluate the effects of cysteine-SH-directed regents on the redox status,
structure and function of human heat shock transcription factor 1 (hHSF1),
treatment in vitro of hHSF1 with 0.3-0.5 mmol/L oxidizing reagent diamide (DM) and treatment in vivo of
HeLa cells with 1 mmol/L buthionine sulfoximine (BSO), an inhibitor of
γ-glutamylcysteine synthetase, promoted the formation of a compact, intramolecularly
disulfide-crosslinked, stable monomeric form of ox-hHSF1, and blocked the
trimerization and activation of HSF1. The effects of diamine were
dose-dependent and readily could be completely reversed by adding 0.4-0.5 mmol/L reducing reagent
dithiothreitol (DTT) to the samples prior to gel electrophoresis. Computer
modeling of the α-helical
coiled-coil domains of the HSF1 monomer and trimer showed that the alignment of
the N- and C-terminal hydrophobic repeats of HSF1 monomer could bring C3(Cys153)close to C4 and C5(Cys373 and Cys378, respectively), in positions permissible for
disulfide bond formation under appropriate experimental conditions. The results
suggest that redox-dependent thiol-disulfide exchange can provide a mechanism
for regulation the conformation and activity of hHSF1.
Key words hHSF1; redox; thiol;
cysteine
Received: January 20, 2003 Accepted: March 20, 2003
This work was supported by the grants from
the National Natural Sciences Foundation of China (No. 30070829) and Guangdong Natural
Sciences Foundation (No. 001324)
*Corresponding author: Tel, 86-20-87331142;
e-mail, [email protected]
氧化还原作用对热休克转录因子1结构和功能的调控
林正* 黄帆 马中富 徐康 LIU Alice Y1
( 中山大学附属第一医院中心实验室, 广州 510080; 1Department of Cell Biology and
Neuroscience, Rutgers State University of New Jersey 08854 )
摘要 为了评价半胱氨酸巯基氧化还原介导剂对人热休克转录因子1(hHSF1)的氧化还原、 结构和功能的作用, 在体外用浓度为0.3~0.5 mmol/L的巯基氧化型介导剂二酰胺(diamide DM)处理hHSF1; 在体内用浓度为0.1 mmol/L的γ–谷氨酰半胱氨酸合成酶抑制剂丁硫堇处理HeLa细胞, 都可形成一种致密的、 分子内二硫键交联的氧化型hHSF1(ox-hHSF1), 使hHSF1三体形成和活化被阻断。 二酰胺的这种作用呈剂量依赖; 在电泳前加入浓度为0.4~0.5 mmol/L的巯基还原剂二硫苏糖醇(DTT)到DM处理过的标本中再培育, 能迅速和完全逆转这种作用。 HSF1单体和三体功能域α–螺旋卷曲结构的计算机模型显示, 在hHSF1单体N端和C端的疏水重复区中,
半胱氨酸C1(第153位氨基酸)与半胱氨酸C4(第373位氨基酸)、C5(第378位氨基酸)非常接近, 在合适的氧化作用下很容易形成二硫键, 使HSF1单体形式较为稳定, 不能形成三体并活化。 结果表明, hHSF1的结构和功能与半胱氨酸上巯基的氧化还原化学性能相关;氧化作用和转录因子分子内巯基二硫键交联形成ox-HSF1单体, 可能是衰老细胞热体克转录反应呈渐减性的原因。
关键词 人热休克转录因子1; 氧化还原; 巯基; 半胱氨酸
很多证据已表明,
衰老以及大部分与年龄相关的疾病都与蛋白质的氧化损伤有关, 并伴有被氧化修饰的蛋白质水平的升高[1~4]。 细胞中对氧化还原作用特别敏感的主要成分是转录因子,
如核因子Kappa B (NF-κB) 、活化蛋白1(AP-1)、缺氧诱发因子1(HIF-1)、热体克转录因子1(HSF1)等[5~7]。 HSF1属于核转录因子, 主要调节细胞对热和其他形式应激的反应。
高等真核细胞处于非应激状态时, HSF1以无活性的单体形式存在于细胞质中; 应激状态时, HSF1单体产生核转移并去折叠形成同源三体, 进一步被激活并与DNA(热激元件, HSE)相结合, 从而启动了一系列基因的表达。
作者和其他实验室早期工作提示, HSF1启动的转录反应在细胞和生物体衰老过程中呈渐减性[8,9]。
巯基作为蛋白质氨基酸中具特殊功能的基团,
是维持细胞氧化还原平衡的关键成分, 在细胞氧化还原反应中起敏感的“开关器”作用[10]。 巯基二硫键转换具有氧化还原依赖性,
也是翻译后的修饰机制之一, 主要调节蛋白质的结构与功能[11]。 最近报告指出,
能发生可逆性氧化还原反应的核转录因子中的半胱氨酸巯基是维持细胞氧化还原平衡的关键成分[12]。 氧化还原作用可能影响hHFS1的半胱氨酸巯基的基本结构, 从而导致其三体形成和活化功能发生改变。
本实验使用巯基氧化还原介导剂在体外和体内作用于hHSF1, 试图去了解这些氧化还原介导剂对hHSF1结构和功能的作用。 并利用HSF1单体和三体功能域α螺旋卷曲结构的计算机模型证实以上实验结果, 最后讨论了细胞衰老中热休克转录反应呈渐减性的可能原因。
1 材料和方法(Materials and
Methods)
1.1 材料
多克隆抗hHSF1抗体由Dr.Liu的实验室使用组氨酸标记的hHSF1 免疫成年新西兰白兔产生, 经Qiagen公司的Ni2+-次氮基三乙酸树脂纯化(Ni2+-nitrilotriacetic
acid resin); ECL Western 印迹检测药盒、 [α-32P]dATP (S.A. 3000 Ci/mmol) 购自Amersam公司; 二酰胺和二硫苏糖醇购自Sigma公司; 在凝胶电泳迁移率变动分析(EMSA)试验中检测hHSF1-DNA结合活性的合成寡核苷酸HSE序列为5′-GCCTCGAATGTTCGCGAAGTTTCG-3′(正链)。
1.2 方法
1.2.1 细胞培养和S100细胞提取液制备 单层HeLa细胞生长在含10%胎牛血清和适量抗生素的DMEM培养液中, 5% CO2, 37 ℃;
热休克处理细胞的条件是42 ℃, 60 min。
为了获得高浓度的hHSF1以保证hHSF1-DNA结合活性检测效果, 按文献[8]的方法制备HeLa细胞S100提取液。
用4倍体积缓冲液A[15 mmol/L HEPES(pH 7.9)、10 mmol/L KCl、1.5 mmol/L MgCl2、 0.5 mmol/L DTT、 0.5 mmol/L PMSF、1 mg/L亮抑酶肽(leupeptin)和抑胃酶肽(pepstatin)、10 u/L 抑蛋白酶肽(aprotinin)]悬浮离心后收获的细胞,
再离心, 用2倍体积同一缓冲液再悬浮, 置冰浴中15 min, 然后用杜氏匀浆器磨碎细胞。
10 000 g离心细胞匀浆, 8 min, 沉淀的细胞核留作制备核提取液。 转移上清液到新的1.5 mL离心管, 加入1.1倍的缓冲液B[180
mmol/L HEPES(pH 7.9)、20%甘油、1.0 mol/L
NaCl、13.5 mmol/L
MgCl2、0.2 mmol/L
EDTA、0.5 mmol/L
DTT、0.5 mmol/L
PMSF、1 mg/L亮抑酶肽和抑胃酶肽、10 u/L抑蛋白酶肽],
充分混合后, 再超速离心100 000 g, 60 min。 最后在50倍的缓冲液D[25 mmol/L HEPES (pH 7.9)、 22%甘油、100 mmol/L
KCl、0.2 mmol/L
EDTA、0.5 mmol/L
PMSF、0.5 mmol/L
DTT]内, 4 ℃透析上清液4 h。 分装, 保存在-70 ℃中备用。
1.2.2 细胞内谷胱甘肽缺乏对hHSF1的调节影晌 为了研究具抗氧化作用的谷胱甘肽缺乏对细胞内氧化还原状态和hHSF1结构及功能的影响, 加1 mmol/L γ–谷氨酰半胱氨酸合成酶抑制剂丁硫堇(buthionine sulfoximine, BSO)到培养的HeLa细胞中。 37 ℃培育24 h, 接着再培育2 h作对照或热休克处理。 然后收集细胞并根据描述的方法制备全细胞提取液[6]。
1.2.3 Western印迹 使用非变性凝胶蛋白质电泳、 凝胶和电泳缓冲液中, 均不含SDS以免蛋白质变性。
为了能在电泳中检测hHSF1的氧化还原构象, 标本缓冲液中不含巯基还原剂,
如β巯基乙醇(β-mercaptoethanol)和DTT。
电泳前把0~0.5 mmol/L的DM或DTT加到含hHSF1的S100细胞提取液中, 20 ℃培育20 min。 标本经处理和电泳后, 把凝胶放进含5 mmol/L DTT的平衡缓冲液中置15 min, 然后再在含1 mmol/L DTT的转移缓冲液中通过SD-Dry半干转移槽把蛋白质转移到硝酸纤维素薄膜上。 第一抗体为抗hHSF1多克隆抗体(1∶2500),
第二抗体为棘根过氧化酶连接的羊抗兔IgG。 使用ECL Western药盒检测结果。 特异性hHSF1的分子量约为85~90 kD。
1.2.4 凝胶电泳迁移率改变试验(EMSA)检测hHSF1-DNA结合活性 如文献[6]所述,
用0~1 mmol/L DM在20 ℃中处理含20 μg蛋白质的S100细胞提取液10 min, 然后在42 ℃中热处理标本60 min。 为了检测DTT对DM的逆转作用, 在热处理前加入5 mmol/L DTT到特定标本中室温下培育10 min, 然后把这些已处理过的标本与含25 000~30 000 cpm的32P标记的含有4个反向重复的NGAAN
HSE序列作用, 同时加入500 ng Poly(dI/dC)用以结合非特异性蛋白质。 25 ℃培育30 min。 最后在4%低离子、非变性聚丙烯酰胺凝胶中电泳。
1.2.5 hHSF1单体和三体α–螺旋卷曲功能域的计算机模型分析 采用Tripos Associates公司(ST.Louis, MO, USA)的Syby1软件分析系统,
通过国际互联网Blast系统的氨基酸序列搜索。 HSF1单体螺旋卷曲结构以序列相似的MHC相关FC受体结构为基础; HSF1同源三体功能域螺旋卷曲结构, 以流行性感冒病毒红细胞凝集素三体螺旋型卷曲部位为基础。
2 结果(Results)
为了探讨氧化还原介导剂怎样改变hHSF1构象而影响其激活功能, 本试验使用促进蛋白质巯基二硫键交联的氧化介导剂DM与含有hHSF1的S100细胞提取液共同培育20 min。 早期使用常规Western印迹法, 发现加入DM后的标本失去免疫检测活性,
但使用巯基还原介导剂DTT可使hHSF构象重新出现,
估计可能是二硫键的形成屏蔽了hHSF1抗原核心, 以致抗hHSF1抗体失去识别能力。 为此, 考虑在电泳后用DTT处理已分离蛋白质的凝胶, 使二硫键断裂, 恢复其免疫识别能力而有可能检测出DM所致的ox-hHSF1构象。 通过此方法, 无论在变性凝胶或非变性凝胶电泳中都可发现一个明显的ox-hHSF1。
2.1 hHSF1的氧化还原构象
图1显示, 在非变性凝胶电泳的Western印迹中使用抗hHSF1抗体, 无论在全细胞或S100提取液, 如果没有巯基氧化剂DM的作用, 只出现hHSF1信号[图1(A), 泳道1、2]。 但浓度为0.3 mmol/L以上的DM与蛋白质标本在25 ℃中培育10 min, 即可出现一个电泳移动明显快速的蛋白质带[图1(A),
泳道 5~7]并随DM剂量加大而增加; 而在电泳前加入浓度为0.4 mmol/L以上的巯基还原剂DTT到DM处理过的标本中再培育(25 ℃, 10 min), 能使这种蛋白质迅速逆转[图1(B),
泳道6、7]。 另外,
我们还曾从非变性凝胶电泳中把这种移动快速的蛋白质洗脱出来, 用10 mmol/L DTT还原后, 再电泳, 发现其变为一种85~90 kD的正常hHSF1蛋白质(图未显示)。 这有力说明电泳中移动快速的蛋白质带并非hHSF1降解产物, 而是一种分子内二硫键交联的ox-hHSF1。
