Effect
of Calpain on the Degradation of tau Protein in Rat Brain Cortex Extracts
FANG Zheng-Yu, LIU Shi-Jie,
WANG Xiao-Chuan, LIU Rong, WANG Qun, CHEN Zheng-Yue, WANG Jian-Zhi*
( Neuroscience Institute, Pathophysiology Department, Tongji Medical College, Huazhong University of Science and Technology, Wuhan 430030,
China )
Abstract Calpain
is a calcium-activated protease and has two ubiquitously distributed mammalian
isoforms, namely calpain 1 (calpain I, μ-calpain and CAPN1) and calpain 2
(calpain II, m-calpain and CAPN2). Calpains regulate the function of many
proteins by limited proteolysis. To determine the nature of different subtypes
of calpain on degradation of microtubule-associated protein tau, the rat cortex
extracts were incubated with 0.2 mmol/L, 1 mmol/L, 3 mmol/L and 5 mmol/L of
CaCl2 for 15 min at 37 ℃, respectively, and it was found that Ca2+
treatment at concentrations 1-5 mmol/L led to significant proteolysis of the tau protein and this
degradation was blocked by calpain inhibitor, calpeptin. In addition, when the
extracts containing 1 mmol/L CaCl2 were treated with μ-calpain inhibitor (0.05
μmol/L of calpastatin) or m-calpain inhibitor (100 μmol/L calpain inhibitor IV)
or both, the Ca2+-induced degradation of tau protein was blocked to
about 8.6%, 92.5% and
97.8% compared with the group with 1 mmol/L CaCl2, respectively. These data
suggest that both μ-calpain and m-calpain in brain cortex extracts are
activated by Ca2+ and both of them degraded tau protein, although,
m-calpain plays a more important role in proteolysis of the tau protein.
Key words calpain; tau protein;
calcium; Alzheimer disease
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Received: March 31, 2003 Accepted: May 7, 2003
This work was supported by the grants from
the National Natural Science Foundation of China (No. 39925012, No. 39970808,
No. 30100213)
*Corresponding author: Tel, 86-27-83692625; Fax,
86-27-83693883; e-mail, [email protected]
钙蛋白酶对鼠脑皮质中细胞骨架蛋白
tau的降解作用
方征宇 刘世杰 王小川 刘蓉 王群 陈正跃 王建枝*
( 华中科技大学同济医学院病理生理学系,神经科学研究所, 武汉
430030 )
摘要 钙蛋白酶(calpain)是钙依赖性中性蛋白酶, 根据其对钙敏感性的不同, 可分为m-和μ-钙蛋白酶两型。 分别用不同浓度CaCl2溶液温育Wistar大鼠脑皮质匀浆液, 并用Western印迹和定量图像分析技术检测不同亚型钙蛋白酶对tau蛋白的降解作用。 发现:在37 ℃用1 mmol/L Ca2+温育底物15 min, 即出现大量分子量为29 kD的tau蛋白降解片段; 当Ca2+浓度为5 mmol/L时, tau蛋白几乎全部被降解; 这种tau蛋白降解可被特异性的钙蛋白酶抑制剂完全逆转。
进一步的研究发现, 分别用μ-钙蛋白酶抑制剂(0.05
μmol/L calpastatin), m-钙蛋白酶抑制剂(100
μmol/L calpain inhibitor IV)或总钙蛋白酶抑制剂(552 μmol/L calpeptin)与1 mmol/L Ca2+共同温育Wistar大鼠脑皮质匀浆液, 1
mmol/L Ca2+激活的tau蛋白降解分别被抑制8.6%、 92.5%和97.8%。
该研究结果表明, 一定浓度的Ca2+可同时激活μ-钙蛋白酶和m-钙蛋白酶, 这两种亚型均参与降解tau蛋白, 但m-钙蛋白酶的作用比μ-钙蛋白酶更强。
关键词 钙蛋白酶; tau蛋白; 钙离子; 阿尔茨海默病
阿尔茨海默病(Alzheimer’sdisease, AD)是一种典型的神经退行性疾病,
其主要临床表现为进行性加重的记忆力减退和认知功能低下, 发病率随年龄增长而显著上升。
AD两大特征性病理改变为:神经元外的老年斑(senile plaque, SP)和神经元内的神经原纤维缠结(neurofibrillary tangles, NFTs)。 NFTs由成对螺旋细丝(paired
helical filaments, PHF)构成, 而成对螺旋细丝的主要成分是过度磷酸化的tau蛋白[1~4]。
过度磷酸化的tau蛋白也可和正常tau蛋白结合成螺旋细丝。 虽然NFTs的形成机制在很大程度上还不清楚, 但是蛋白水解酶系统功能障碍可能在神经原纤维退化过程中起重要作用。
钙蛋白酶(calpain)是钙依赖性中性蛋白酶, 其活性中心富含半胱氨酸。 最早于1964年由Guroff[5]从大鼠脑组织匀浆液中提取。
随后, Yoshimura等[6]从大鼠肾脏纯化出对钙敏感性不同的两种钙蛋白酶亚型,
即钙蛋白酶1 (μ-钙蛋白酶, CANP1)和钙蛋白酶2(m-钙蛋白酶, CANP2)。 钙蛋白酶参与细胞增殖、 分化和凋亡等基本细胞事件[7,8]。
体外实验发现tau蛋白是其特异性底物, 激活的钙蛋白酶可降解PC12细胞中的tau蛋白[9]。
然而, 目前对不同亚型钙蛋白酶对tau蛋白的作用尚无报道, 而阐明这一问题对设计相应策略激活特定亚型钙蛋白酶, 防止或阻断AD样tau蛋白聚积有指导意义。
本文用CaCl2溶液在37 ℃温育大鼠脑皮质匀浆液, 以此激活钙蛋白酶, 或同时采用μ-型和m-型钙蛋白酶抑制剂,
研究钙蛋白酶及其亚型对tau蛋白的降解作用。
1 材料和方法(Materials and Methods)
1.1 材料
1.1.1 动物 健康雄性清洁级Wistar大鼠, 体重180~250 g, 购自华中科技大学同济医学院实验动物中心。
1.1.2试剂与仪器 μ-钙蛋白酶抑制剂(calpastatin)、 m-钙蛋白酶抑制剂(钙蛋白酶抑制剂IV)、 总钙蛋白酶抑制剂(calpeptin)购自CalBiochem公司; 无水氯化钙(分析纯)购自广东西陇化工厂; 40%聚丙烯酰胺, 四甲基乙二胺(TEMED), 三羟甲基氨基甲烷(Tris)购自Sigma公司; 过硫酸铵和二喹啉甲酸(bicinchoninic acid, BCA)购自Pierce公司; 一抗为tau Ab-2购自NeoMarkers公司, 二抗为碱性磷酸酶标记的羊抗鼠IgG购自Sigma公司。 酶标仪购自Pharmacia Biotech公司; 垂直型电泳槽和湿式电转膜槽购自Hoefer Scientific
Instruments公司; DY-C电泳仪购自东方特立科贸中心; 转膜仪购自Bio-Rad; 图像分析系统-Image pro-plus kodak购自Kodak公司。
1.2方法
1.2.1 取材 大鼠腹腔注射0.03 g/mL水合氯醛(每100 g 注射1 mL), 麻醉后将其颈椎脱臼断头处死,
迅速取出脑组织, 置于冰浴快速分离双侧大脑皮质,
并制备成25%匀浆液[20 mmol/L Tris・HCl (pH 7.2)、 0.5% NP-40、 150 mmol/L NaCl、 2 mmol/L MgCl2、 10 mmol/L NaF、 1 mmol/L Na3VO4・12H2O、 1 mmol/L EGTA、 1 mmol/L PMSF、 5 mg/L抑蛋白酶肽、2 mg/L抑胃酶肽], 4 ℃ 10 000 g离心15 min, 取上清备用[10~12]。
1.2.2 量效和时效关系的检测
(1)钙与tau蛋白降解间的量效关系分别用0.2 mmol/L、 1 mmol/L、 3 mmol/L和5 mmol/L CaCl2溶液在37 ℃温育Wistar大鼠脑皮质匀浆液上清液15 min, 然后加入10 mmol/L EGTA, SDS上样缓冲液, 加热煮沸5 min终止反应。 2)钙与tau蛋白降解间的时效关系用1 mmol/L CaCl2溶液在37 ℃分别温育脑皮质匀浆液上清液0
min、5 min、10 min、15 min和30 min, 然后终止反应。
(3)钙蛋白酶抑制剂与tau降解间的量效关系分别将0.01 μmol/L、 0.05 μmol/L、 0.25 μmol/L μ-钙蛋白酶抑制蛋白; 20 μmol/L、 100 μmol/L、 500 μmol/L钙蛋白酶抑制剂IV(m-钙蛋白酶抑制剂); 276 μmol/L、 552 μmol/L、 1104 μmol/L calpeptin(总钙蛋白酶抑制剂)与含1 mmol/L CaCl2的脑皮质匀浆液上清液37 ℃温育15 min, 然后终止反应(根据产品说明以及实验中所做的量效曲线来选择试剂浓度[13~15])。
1.2.3 μ-和m-钙蛋白酶对tau的降解作用 分别用1 mmol/L CaCl2, 1 mmol/L CaCl2+0.05 μmol/L μ-钙蛋白酶抑制蛋白, 1 mmol/L CaCl2 +100 μmol/L钙蛋白酶抑制剂IV, 1 mmol/L
CaCl2 +0.05 μmol/L μ-钙蛋白酶抑制蛋白+100 μmol/L钙蛋白酶抑制剂IV, 1 mmol/L
CaCl2+552 μmol/L总钙蛋白酶抑制剂(calpeptin)
37 ℃温育脑皮质匀浆液上清液15
min后终止反应。
1.2.4 Western印迹[16, 17]BCA法检测样品蛋白质浓度后, 在样品中加入10% β-巯基乙醇, 置水浴煮沸3~5 min, 然后将样品加入10%SDS-PAGE, 每孔上样30 μg, 恒流(10 mA/胶)电泳约30 min后改为恒压(100 V)约60 min[电泳缓冲液为:50 mmol/L Tris・HCl (pH 8.3), 250 mmol/L甘氨酸; 0.1% SDS]。 电泳结束后, 将蛋白质从凝胶转移至NC膜(Pharmacia公司), 转移电压为100 V(≈270 mA), 转移时间为1 h[电转移缓冲液为:25
mmol/L Tris・HCl (pH 8.3)、 193 mmol/L甘氨酸、 10%甲醇]。 膜在封闭液(3% BSA、 5% 脱脂牛奶粉溶于TBS)中室温封闭过夜。 将一抗tau Ab-2(1∶200)与NC膜在37 ℃温育2 h, 与碱性磷酸酶标记的羊抗鼠IgG 37 ℃温育1 h, 用5-溴-4-氯-3吲哚磷酸一对氨基甲苯盐(BCIP 30 g/L)和对硝基蓝四唑氯(NBT 15 g/L)避光显色。
1.2.5 图像分析及统计分析 采用Kodak图像分析系统及Image-Proplus软件处理Western印迹结果。 使用SPSS 11.0统计软件作单因素方差分析。
2 结果 (Results)
2.1 CaCl2温育脑皮质匀浆液导致tau蛋白降解
分别用0.2 mmol/L、 1 mmol/L、 3 mmol/L和5 mmol/L CaCl2溶液在37 ℃温育脑皮质匀浆液上清液15
min。 结果显示:当CaCl2浓度为1 mmol/L、 3 mmol/L和5 mmol/L时, 在29 kD处出现明显的小分子降解片段;
而对照组和0.2 mmol/L CaCl2组不出现该条带(图1)。 提示1~5 mmol/L
CaCl2可能激活Ca2+依赖的蛋白水解酶, 导致tau蛋白降解。
